ВВЕДЕНИЕ

Известно, что субклинический гипотиреоз (СГПТ) – это форма нарушения функции щитовидной железы (ЩЖ), которая еще не проявилась какими-либо признаками заболевания [1]. Выявляется эта форма заболевания определением гормонов крови [2]. Признаком СГПТ считается увеличение в крови количества тиреотропного гормона гипофиза (ТТГ), регулирующего секрецию гормонов ЩЖ. Исходя из вышеотмеченного, можно сделать вывод, что даже при внешне незаметном снижении ее функции количество ТТГ увеличивается. Одновременно с этим в крови обнаруживается нормальное или слегка пониженное количество гормонов щитовидной железы [3]. При СГПТ наблюдаются тя­­жёлые ос­лож­­не­ния, та­­­кие как кретинизм, сердечная недостаточность, вы­пот в сероз­ные по­лос­ти, вто­­ричная адено­ма гипофиза [4]. Наиболее часто СГПТ раз­ви­ва­ется в ис­­хо­де ауто­им­­мун­но­го тиреоидита, реже – после резекции ЩЖ и те­ра­пии ра­дио­­­активным ¹³¹I. Большую редкость представляет СГПТ, раз­­вив­шийся в исходе под­­­ост­ро­го, фибро­зи­рую­ще­го и специфических тиреоиди­тов, а так­же СГПТ – в резуль­та­те лечения диффузного ток­сического зо­ба ти­рео­ста­­­тиками [5]. Также причинами СГПТ могут являться – аплазия и дисплазия ЩЖ, эн­­де­ми­­чес­­кий зоб, врож­дён­ный дефицит ТТГ, синдром пе­ри­фе­­­ри­ческой резистен­т­нос­ти к тиреоидным гормонам (ТГ) – казуистика [6]. Диагностика субклинического гипотиреоз проста и конкретна. Единственными критериями, на основании которых устанавливается этот диагноз – нормальный уровень тироксина (Т4) и повышенный уровень ТТГ. Представление о субклиническом нарушении функции ЩЖ базируется на характере взаимоотношения продукции ТТГ и Т4 [7].

ТТГ является гликопротеидным гормоном, стимулирующим образование и секрецию гормонов ЩЖ трийодтиронина (Т3) и Т4. Вырабатывается передней долей гипофиза. Анализ крови на ТТГ – не­об­ходимый этап в диагностике заболеваний ЩЖ, показывающий отклонение от нормы: ТТГ – пониженный или повышенный ТТГ. Если результат гормонального анализа – пониженный, это дает врачу повод заподозрить СГПТ, тяжелые психические заболевания, недостаточность функции надпочечников, различные опухоли (опухоль гипофиза и др.). Повышенный ТТГ может возникать как следствие физической нагрузки и приема некоторых медицинских пре­па­ратов (противосудорожных средств, рентгеноконтрастных средств и др.). Низкий ТТГ мо­жет быть признаком гипертиреоза, травмы гипофиза, снижения функции гипофиза. Анализ помогает вы­явить скрытый СГПТ, зоб, миопатию, депрессию, алопецию, бесплодие, импотенцию и сни­же­ние либидо, гиперпролактинемию [8].

Гормоны ЩЖ – ТГ: Т3 и Т4 играют важную роль в деятель­но­сти ряда жизненно важ­ных функций организма, в частности, в ре­гуляции обмена ве­­ществ путём стабилизации внут­рен­ней среды жи­во­го ор­га­низ­ма. Немаловаж­ная роль принадлежит гормонам ЩЖ влияю­­щим не­посред­ственно на дея­­тельность нервной клетки, как, например, на её транспортные сис­те­мы, на мо­ле­кулярные ме­­ханизмы кле­точ­ной де­я­­тель­нос­ти, а так­­же на центральную нервную систему в целом в пе­ри­од её развития [9]. Характерной осо­­беннос­тью ТГ явля­ет­ся присутст­вие в их мо­ле­­ку­ле в ка­чест­ве обя­­за­тель­­но­го ком­по­нен­та йода, ре­гу­лярно поступающе­го в ор­г­а­­­низм с пи­щей и во­дой в виде йо­­­ди­дов, кото­рые в дальнейщем под­вер­гаются окис­ле­­­нию до йо­да. Пос­­­ледний включается в мо­лекулу белка, об­ра­зуя моно­йод­ти­ро­зи­ны и ди­­йод­ти­ро­зи­ны. Конден­­­сация двух молекул ди­йод­тирозина с потерей одного ос­­татка – ала­ни­на при­во­дит к об­ра­зов­а­нию ТГ: Т4, а при сое­ди­­не­нии мо­ле­кулы ди­­­­йодтирозина с моле­ку­лой монойодтирозина об­ра­зу­ет­­ся ТГ: Т3. При нор­­маль­ном функцио­ни­ро­вании ЩЖ располагает боль­­­шим за­па­­­сом орга­нического йода в резуль­та­те чего её функция может дли­тель­но осущест­вляться нормально, даже при не­дос­та­т­ке поступления йода из внешней сре­­ды. Однако в случае дли­тель­ного де­фицита йо­да в орга­низ­ме нарушается нор­ма­льное функциони­ро­вание ЩЖ, приводящее к блокаде синтеза ТГ, что яв­ляется при­­чиной развития гипотиреоидного статуса со всеми пос­­­ле­дую­щи­ми не­га­тив­ными послед­ст­виями (наруше­ние окисли­тельных про­­­цессов и ми­не­раль­но­го обмена, и, прежде всего, об­ме­на хло­­ридов; снижение син­теза белков и про­­цессов обмена углеводов и жи­ров и др.). Из­вестно так­же, что мно­­гие яв­ле­­­ния, возникающие как следствие недостатка гор­мо­­нов ЩЖ, мо­гут быть устранены введением йодидов и ТГ [10].

Исходя из рассмотрения сис­те­мы ней­ро­эн­докрин­ной регуляции клетки, из­вест­но, что дан­ную сис­те­му помимо ТГ и сте­ро­и­дных гормонов, составляют также нейро­ме­ди­аторы, одним из ко­торых яв­л­яется аце­тил­холин, являющийся одним из эфиров хо­лина [11]. Иссле­до­ва­ния [12] свидетельствуют о том, что в кор­ре­ги­ро­вании сома­ти­чес­ких и ней­ро­ген­ных нару­ше­ний не­вто­ро­с­те­­пенна роль эфи­­ров и амидов холина, заслужи­ваю­­щих су­ще­с­т­вен­ного вни­ма­ния с точ­­­ки зрения особенностей их син­­­теза и биологичес­­кой актив­ности [13]. Вмес­те с тем про­­­дол­­жа­ют отсутствовать сведения относи­тель­но дей­ствия эфи­ров и амидов хо­­ли­на на из­ме­не­ние по­ка­зателей ТТГ, общего Т3 и Т4 в крови у крыс раз­лич­ных возрастных групп при пато­ло­гиях ЩЖ типа CГПТ.

Учитывая вышесказанное, нами, в данных сериях научных исследований проведено изу­че­ние комбинированного действия сверхмалых доз (СМД) 10^-13 и 10^-17 М холинового эфира N – (4 – бромбензоил) – α, β – дегидрофенилаланина (ХЭ1) и холинового эфира N – (2 – меток­си­бен­зо­ил) – O – изопропил – α, β – дегидротирозина (ХЭ2), отно­ся­щимся к холиновым эфирам N – замещённых α, β – дегидроаминокислот (ХЭА) на изменение показателей ТТГ, общего Т3 и Т4 в крови у двух­ме­сяч­ных крыс при СГПТ.

МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

Исследования проведены на 100 двухмесячных крысах-самцах (линии Вистар), так как они удобны для массовых экспериментов и у них по сравнению с со­ба­ка­ми, кошками, кро­ли­ка­ми отмечается боль­шая интенсивность фи­зио­ло­ги­ческих показате­лей, про­текающих в зна­чи­­тель­но более короткие промежутки вре­ме­ни, что яв­ляется весьма при­ем­ле­мым для ближай­ших и в особенности от­далённых наб­лю­де­ний, свя­зан­ных с изу­че­нием сос­тоя­ния восста­но­­ви­тель­­ных процессов.

СГПТ вызы­вал­ся пу­тём прове­де­ния ти­ре­о­ид­эк­то­мии (ТЭК), осу­щест­­влялённой по следующему алгорит­му. Для про­ве­­де­ния опе­ра­ции кры­сы под эфир­ным нар­ко­зом фик­сировались в положении на спи­не. Дос­туп к ЩЖ осу­щест­влялся через разрез кожи в области шеи. Затем об­на­­жа­лась ЩЖ, про­изводили от­пре­­па­ровку 2/3 её части с сохра­не­ни­ем пара­щи­то­вид­ных же­лёз и с по­мощью ост­рых ножниц до­ли от­се­ка­лись, после чего под каждую из них под­води­лись лигатуры. Раны послойно заши­ва­лись. Жи­вот­ные хорошо переносили опе­ра­цию и спус­тя 0,5 – 1 час после опе­­рации под­хо­ди­ли к корму и воде. ТЭК в дан­ных сериях экс­пе­ри­­мен­тальных ис­следований была проведена у 90 крыс. Животные были раз­делены на 4 под­опытные груп­­пы: 1) ин­тактные жи­вотные – 10 эк­земп­ляров; 2) животные с СГПТ, не по­лу­чав­ших каждо­днев­ных инъек­ций ХЭА – 20 экземпляров; 3) живот­ные с СГПТ, получавшие сочетанные инъекции ХЭ1 и ХЭ2 в дозе 10^-13 М в те­чение 14 дней – 35 экземп­ля­ров; 4) живот­ные с СГПТ, получавшие сочетанные инъекции ХЭ1 и ХЭ2 в дозе 10^-17 М в те­чение 14 дней – 35 экземп­ля­ров.

В сыворотке с помощью метода ИФА определялась концентрация ТТГ, общего Т3 и общего Т4 посредством ИФАН RISER 8793, разработанного для качественной или количественной оценки результатов ИФА и используемого в медицине, биологии, фармакологии, пищевой промышленности, сельском хозяйстве и ветеринарии и в службах санэпиднадзора. Принцип работы набора заключается в том, что определение уровня ТТГ (или ТГ) основано на использовании конкурентного варианта твердофазного ИФА. На внутренней поверхности лунок планшета иммобилизованы машинные моноклональные антитела к ТТГ (или ТГ). В лунке планшета вносят исследуемый образец и конъюгат (Т4, конъюгированный с пероксидазой). Во время инкубации ТТГ (или ТГ) образца конкурирует с конъюгированным ТТГ (или ТГ) за связывание с антителами на поверхности лунки. В результате образуется связанный с пластиком «сэндвич», содержащий пероксидазу. Во время инкубации с раствором субстрата тетраметилбензидина происходит окрашивание растворов в лунках. Интенсивность окраски обратно пропорциональна концентрации ТТГ (или ТГ) в исследуемом образце. Концентрацию ТТГ (или ТГ) в исследуемых образцах определяют по калибровочному графику зависимости оптической плотности от содержания ТТГ (или ТГ) в калибровочных пробах.

Статистическая обработка результатов производилась в среде Statistica 6.0 for Windows по методу ANOVA с post-hoc анализом по U-критерию Манна-Уитни. Сравнение полученных результатов до и после воздействия производилось по критерию Вилкоксона для непараметрических данных, разброс данных на рисунках – стандартное отклонение.

РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

ТЭК у крыс с СГПТ приводила к возникновению у них характерных сдвигов в содер­жа­нии ТТГ и ТГ в сыворотке крови.

На рис. 1 представлены результаты исследования изменения концентрации ТТГ и ТГ в сыворотке крови у двухмесячных крыс с СГПТ до и после комбинированного воздействия СМД ХЭ1 и ХЭ2 в дозе 10^-13 М каждого соединения.

На рис. 2 представлены результаты исследования изменения концентрации ТТГ и ТГ в сыворотке крови у двухмесячных крыс с СГПТ до и после комбинированного воздействия СМД ХЭ1 и ХЭ2 в дозе 10^-17 М каждого соединения.

Как видно на рисунках 1, 2, Б – ТЭК при­во­дила к значительному повышению содержания ТТГ на 366 % (рис. 1, Б) и на 459 % (рис. 2, Б), соответственно, в сыворотке крови у крыс с СГПТ; содержание общего Т3 у крыс с СГПТ понижалось на 5 % по сравнению с ин­тактными животными (рис. 1, Б) и на 8 % по сравнению с ин­тактными животными (рис. 2, Б); содержание же общего Т4 понижалось на 7, 9 % (рис. 1, Б) и на 4, 1 % (рис. 2, Б), соот­вет­ственно.

После комбинированного введения ХЭ1 и ХЭ2 в дозе 10^-13 М в течение 14 дней у крыс с СГПТ были отмечены следующие показатели: содержание ТТГ в крови соста­ви­ло  110 % по сравнению с нормой принятой за 100 % (рис. 1, В); содержание общего Т3 сос­­та­ви­ло 2, 3 % по сравнению с нормой принятой за 100 %; содержание общего Т4 составило 2,3 % по сравнению с нормой принятой за 100 % (рис. 1, В).

После комбинированного введения ХЭ1 и ХЭ2 в дозе 10^-17 М в течение 14 дней у крыс с СГПТ были отмечены следующие показатели: содержание ТТГ в крови соста­ви­ло  87, 9 % по сравнению с нормой принятой за 100 % (рис. 1, В); содержание общего Т3 сос­­та­ви­ло 1, 4 % по сравнению с нормой принятой за 100 %; содержание общего Т4 составило 2, 1 % по сравнению с нормой принятой за 100 % (рис. 1, В).

Полученные данные свидетельствуют о том, чти применение СМД ХЭА спо­собствовало нормализации практически до нормы вышеуказанных показателей ТТГ и ТГ в сыворотке крови у двухмесячных крыс с СГПТ.

ОБСУЖДЕНИЕ 

Полу­чен­ные результаты могут быть учтены в кли­нической прак­ти­ке, при прогнози­ро­ва­нии течения и исхода функционального вос­ста­нов­ле­ния у лиц с патоло­ги­ей ЩЖ, такой, как ГПТ. Представленный анализ недавних изучений нейропротекторных агентов, антиокси­дан­тов, стволовых кле­ток, вак­цин, различных хирургических техник позво­ляют зак­лю­чить, что нуж­ны новые эффективные средства для лечения экспериментальной патологии ЩЖ крыс типа ГПТ [14]. Несмотря на интенсивные исследования, следует отметить фак­тическую бе­­­з­ус­­пеш­ность сов­ре­мен­ных достижений при попытках терапии спе­ци­фического забо­ле­ва­ния ЩЖ типа ГПТ, как правило, при­во­дя­щего к тяжелой инвали­ди­за­ции.  С учё­том мульти­фак­­тор­ной и мультифазной модели развития патологий ЩЖ, таких как ГПТ, эф­фек­тив­ным мо­жет стать нейропротекторная стратегия терапии синтетическими производными холи­на, типа ХЭА [15, 16].

Продукция ТТГ гипофизом и ТГ ЩЖ характеризуется обратной логарифмической зависимостью. То есть уже при минимальном снижении уровня Т4, которое еще может не улавливаться лабораторными методами, происходит значительное увеличение уровня ТТГ. Уровень ТТГ интегрально отражает варьирующий уровень Т4, на протяжении примерно 2 месяцев. В связи с этим, общая тенденция к снижению уровня Т4 и его периодические падении ниже нормы приведут к увеличению уровня ТТГ [18].

Необходимым и достаточным исследованием для оценки функции щитовидной железы является определение уровня ТТГ с помощью высокочувствительных методов. При обнаружении повышенного уровня ТТГ дополнительно определяется уровень свободного Т4 [19].

В заключение можно отметить, что полученные данные по изучению воздействия ХЭ 1 и ХЭ2 могут быть учтены в кли­нической прак­ти­ке, при прогнози­ро­ва­нии течения и исхода функционального вос­ста­нов­ле­ния у лиц с патоло­ги­ей ЩЖ, такой, как СГПТ. Представленный анализ недавних изучений нейропротекторных агентов, антиокси­дан­тов, стволовых кле­ток, вак­цин, различных хирургических техник позво­ляют зак­лю­чить, что нуж­ны новые эффективные средства для лечения экспериментальной патологии ЩЖ крыс типа ГПТ [20]. Несмотря на интенсивные исследования, следует отметить фак­тическую бе­­­з­ус­­пеш­ность сов­ре­мен­ных достижений при попытках терапии спе­ци­фического забо­ле­ва­ния ЩЖ типа СГПТ, как правило, при­во­дя­щего к тяжелой инвали­ди­за­ции.  С учё­том мульти­фак­­тор­ной и мультифазной модели развития патологий ЩЖ, таких как ГПТ, эф­фек­тив­ным мо­жет стать нейропротекторная стратегия терапии синтетическими производными холи­на, типа ХЭА [20 – 22].

Рис. 1. Особенности изменения концентрации тиреотропного гормона гипофиза и тиреоидных гормонов в крови у двухмесячных крыс в норме (А), при гипотиреозе (Б) и после комммбинированного действия сверхмалых доз 10^-13 М холинового эфира N-(4-бромбензоил)-α,β-дегидрофенилаланина и холинового эфира N – (2 – меток­си­бен­зо­ил) – O – изопропил – α, β – дегидротирозина (В). Концентрация тиреотропного гормона гипофиза выражена в мМЕ/мл; трийодтиронина в нг/мл; тироксина в мкг/мл.

Рис. 2. Особенности изменения концентрации тиреотропного гормона гипофиза и тиреоидных гормонов в крови у двухмесячных крыс в норме (А), при гипотиреозе (Б) и после комбинированного действия сверхмалых доз 10^-17 М холинового эфира N-(4-бромбензоил)-α,β-дегидрофенилаланина и холинового эфира N – (2 – меток­си­бен­зо­ил) – O – изопропил – α, β – дегидротирозина (В). Концентрация тиреотропного гормона гипофиза выражена в мМЕ/мл; трийодтиронина в нг/мл; тироксина в мкг/мл.

1. Дедов И. И., Мельниченко Г.А., Свириденко Н.Ю. и др. Диагностика, профилактика и лечение ятрогенных йод индуцированных заболеваний щитовидной железы // Вестник РАМН. –  № 2. –  2006. – С. 15–22.
2. Jorde R. “Subclinical” thyroid disease. J. Tidsskr. Nor. Lageforen., 2002, № 122, v. 9, pp. 938 – 940.
3. Moller N., Mann K. Hypothyroidism treatment: when and what dosage. J. MMW Fortschr. Med., 2009, № 151, v. 14, pp. 34 – 37.
4. Матинян Л. А., Баба¬ха¬нян М. А., Киприян Т. К., Хачатрян Т. С., Марченко З. И. Сравнительное изучение частоты сердечного ритма у гипотиреоидных крыс в норме и при действии йодированного мёда и тироксина. Ж. Вестник МАНЭБ, 2006, т. 11, № 8, с. 221 – 223.
5. Cabadak H., Cuadra A. E., El-Fakahany E. E., Kan B. M(2), M(3), and M(4) muscarinic receptors are expressed in the guinea pig gallbladder. J. Recept. Signal. Transduct. Res., 2009, № 29, v. 1, pp. 63 – 66.
6. Kilbourn M. R., Hockley B., Lee L., Sherman P., Quesada C., Frey K. A., Koeppe R. A. Positron emission tomography imaging of (2R,3R)-5-[(18)F] fluoroe¬thoxy¬ben¬zo¬vesa¬micol in rat and monkey brain: a radioligand for the vesicular acetylcholine transporter. J. Nucl. Med. Biol., 2009, № 36, v. 5, pp. 489 – 493.
7. Киприян Т. К., Топузян В. О., Карапетян И. Р., Хачатрян Т. С. Анализ влияния соче¬тан-но¬го комплекса тироксина и йодметилата 2 – (диметиламно) этилового эфира – N – (п – метоксибензоил) – DL – фенилаланина на электрическую активность повреждён¬ных травмой одиночных мотонейронов спинного мозга крыс. В сб. Международная научная конференция «Актуальные проблемы интегративной деятельности и пластичности нервной системы» посвящ. 80 – летию со дня рождения академика НАН РА и чл. – корр. РАН В. В. Фанарджяна, 2009, Ереван, Изд. «Гитутюн» НАН РА, с. 154 – 158.
8. Ma Q, Kuang A. Advance of researches on thyroid tissues autotransplantation and embryonic stem cell transplantation in therapy of hypothyroidism. J. Sheng Wu Yi Xue Gong Cheng Xue Za Zhi., 2008, № 25, v.5, pp. 1212 – 1230.
9. Ogbera A. O., Ekpebegh C., Eregie A., Kuku S. F. The role of radioactive iodine usage in the management of thyroid disorders with emphasis on sub-Saharan Africa. West Afr. J. Med., 2008, № 27, v. 4, pp. 211 – 217.
10. Lania A., Giavoli C., Ferrante E., Beck-Peccoz P. Central hypothyroidism and growth hormone treatment: clinical care. J. Endocrinol. Invest., 2008, 9 Suppl, pp. 66 – 70.
11. Scarpa V, Kousta E, Tertipi A, Vakaki M, Fotinou A, Petrou V, Hadjiathanasiou C, Papathanasiou A. Treatment with thyroxine reduces thyroid volume in euthyroid children and adolescents with chronic autoimmune thyroiditis. J.  Horm Res Paediatr., 2010, № 73, v. 1, pp. 61 – 67.
12. Свириденко Н. Ю., Молашенко Н. В., Платонова Н. М. и др. Кардиальные и эндокринные аспекты применения амиодарона в современной практике лечения нарушений ритма сердца: метод. пособие.  – М.: 2005.
13. Сердюк С. Е., Бакалов С. А., Голицин С. П. и др. Состояние липидного спектра крови у больных гипотиреозом, вызванным длительным применением амиодарона. Влияние заместительной терапии L-тироксином Кардиология. – № 2. -2005. – С. 22–27.
14. Эпштейн О. И. Сверхмалые дозы: история одного исследования. Москва. Издательство РАМН, 2008, с.15.
15. Хачатрян Т. С. Изменение концентрации тиреотропного гормона гипофиза и тиреоидных гормонов в крови у шестимесячных крыс при гипотиреозе. Ж. Биолог. Журн. Армении, 2013, № 1, т. 65, с 89 – 92.
16. Хачатрян Т. С., Топузян В. О. Роль холинового эфира N-(2-метоксибензоил) – О-изопропил -α, β – дегидротирозина в изменении концентрации тиреотропного гормона гипофиза и тиреоидных гормонов в крови двенадцатимесячных крыс при экспериментальном гипотиреозе. Ж. ДАН РА, 2013, т. 113, № 1, с. 69 – 73.
17. Хачатрян Т. С., Топузян В. О. Особенности изменения концентрации тиреотропного гормона гипофиза и тиреоидных гормонов в крови двухмесячных крыс при гипотиреозе до и после действия холинового эфира N-(2-метоксибензоил) – О-изопропил -α, β – дегидротирозина. Ж. ДАН РА, 2013, т. 113, № 3, с.290 – 294.
18. Хачатрян Т. С., Киприян Т. К. Изменение суммарной и одиночной электрической активности интернейронов и мотонейронов спинного мозга крыс при гипотиреозе и гипертиреозе.  Ж. Информационные технологии и управление, 2006, № 4 – 3, с. 46 – 51.
19. Шацева Е. И., Кононов Е. И., Суслонова Г. А., Романова Т. Б. Особенности липидного обмена у больных с тиреоидной патологией, жителей европейского севере СССР. 1991, Ж. Терапевтический архив. №10, т. 63, с. 210 – 212.
20. Широкова В. И., Голоденко В. И., Демин В. Ф. Йодная недостаточность: диагностика и коррекция. Педиатрия. 2005, Журнал им. Г.Н. Сперанского, №6, с. 68 – 72
21. Суплотова А. А, Губина В. В, Карнаухова Ю. Б. Скрининг врождённого гипотиреоза как дополнительный метод изучения йоддефицитных заболеваний. Ж. Проблемы эндокринологии,1998, №1, т. 44, с. 15 – 19.
22. Торчинский А. А., Жерновков В. Е. Модификация структурного состояния глубоко лежащих слоев липидов мембран эндоплазматического ретикулума in vitro и in vivo ультранизкими концентрациями тиролиберина/ I Ежегодная молодежная конференция ИБХФ РАН – вузы. – Биохимическая физика. 1 – 2 марта 2001 г. – М: с. 12 – 13.

Все статьи автора «Хачатрян Тигран Сергеевич»